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在药物研发与生物标志物分析中,磷酸化蛋白的检测是评估信号通路激活与否的关键环节,目前,常用的检测方法有均相检测技术(HTRF、Lance和AlphaLISA)、流式细胞术(Flow Cytometry)和Western Blot(WB),这三种检测方法各有什么特点?我们如何进行选择呢?各位小伙伴们请往下看!
快速选择指南
高通量筛选? → 选HTRF和AlphaLISA
需单细胞数据? → 选流式细胞术
验证未知靶点? → 选WB
组合策略:WB用于机制探索,流式验证细胞亚群效应,HTRF完成大规模药效评价,可兼顾效率与深度。
均相检测技术(HTRF/LANCE&AlphaLISA)
01
均相检测原理
均相检测技术包括HTRF、Lance和AlphaLISA,以均相的Phospho-STAT3 (Tyr705)检测试剂盒为例,试剂盒中含有一对检测抗体,可分别识别STAT3序列和Tyr705磷酸化位点,且这两个抗体分别携带有供体和受体,当这两种抗体同时与Phospho-STAT3 (Tyr705)结合时,供体与受体在空间上相互靠近,从而产生检测信号,通过酶标仪检测该信号强度,其数值与样品中磷酸化STAT3蛋白的浓度呈正相关。
Principle of HTRF Phospho-STAT3(Tyr705)kit assay.
Principle of AlphaLISA™ SureFire® Ultra™ Phospho-STAT3
02
HTRF/Lance VS AlphaLISA的技术对比
03
均相检测优势
均相检测:无需洗涤步骤,减少操作误差,适合高通量筛选(如384/1536孔板)。
CV值低:数据稳定,整版均一性较好,重复性高。
节省样本:仅需少量细胞裂解液(10–16 μL),适合珍贵样本(如PBMC)。
快速高效:无需包被和洗涤,实验仅需2小时,适合高通量检测。
高灵敏度与特异性:时间分辨荧光技术降低背景干扰,可检测低丰度磷酸化蛋白(如p-STAT3、p-MEK)。
劣势:
如需区分细胞亚群:建议用HTRF/AlphaLISA进行初筛后再结合流式进行细胞亚群的分选。
HTRF Protein detection kit protocol
AlphaLISA Protein detection kit protocol
流式细胞术(Flow Cytometry)
检测原理
固定破膜:甲醛固定细胞,甲醇/去垢剂破膜暴露磷酸化蛋白。
抗体染色:荧光标记抗-p-protein抗体(如p-STAT5-PE)结合靶标。
信号生成:激光激发荧光染料(如PE染料(发射峰578 nm)通过575/26 nm滤片检测),强度反映磷酸化水平。
Principle of Flow Cytometry assay
优势
单细胞分辨率:可分析异质细胞群体中不同亚群的磷酸化状态。
多参数检测:可同时分析表面标志物和胞内磷酸化蛋白(如p-ERK、p-AKT与CD标记共检测)。
动态范围广:适合检测微弱或高度磷酸化的信号,尤其适用于原代细胞或稀有细胞样本。同如上均相检测技术。
劣势:
低通量:胞内染色步骤复杂(固定、破膜易影响表位),实验流程较久,不适合高通量筛选。
设备成本高:流式细胞仪和维护费用较高,数据分析需专业软件。
Flow Cytometry detection protocol
蛋白质免疫印迹(Western Blot)
检测原理
磷酸化依赖的分子量偏移:磷酸化导致ERK构象变化,在SDS-PAGE中p-ERK较ERK迁移慢(表观分子量差异约1-2 kDa)。
抗体识别:一抗特异性识别靶标磷酸化蛋白,二抗偶联HRP或荧光染料,用于信号放大。
Principle of western blot assay
优势
低成本:基础实验室均可开展,适合预算有限的研究。
劣势:
低通量:步骤繁琐(电泳、转膜、封闭、孵育抗体),耗时长达1–2天。
样本需求大:需较多细胞量(通常>10^6细胞/条件),难以分析微量样本。
重复性挑战:转膜效率、抗体批次差异可能影响结果。
Western blot detection protocol
方法对比总结
结语与建议
在抗体药物研发中,磷酸化蛋白检测技术的选择需要综合考量通量、分辨率、成本和样本需求。随着研究精准化需求的提升,多技术联用已成为趋势。
我们推荐:
初筛阶段:HTRF/AlphaLISA高通量筛选
深入分析:流式细胞术单细胞解析
机制验证:Western Blot靶点确认
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